Chemosphere No. I, pp 23 - 30, 1973.
Pergamon Press.
FELDDESORPTIONS EINE
NEUE
METHODE
Printed in ~reat Britain.
- MASSENSPEKTROMETRIE
ZUR
IDENTIFIZIERUNG
VON
PESTIZIDEN
UND
DEREN
METABOLITEN H. R. Schulten, Institut fur Physikalische W. Institut fiir 5kologische
H. Prinz
Chernie
MGnchen
W.
Klein
I, Wegelerstr.
12
und F. Korte
der Gesellschaft
mbH,
H. D. Beckey
der Universit~it 53 Bonn
Tomberg, Chernie
und
fiir Strahlen-
5205 St. Augustin
und Umweltforschung
1
(Received from Germany and accepted for publication 24 January 1973) Die Methode der Felddesorptions-Massenspektrometrie
(FD-MS) zur Analyse organischer
Molekiile wurde 1969 eingefGhrt I). Die wesentlichen Vorteile des Verfahrens wurden a m Betspiel wichtiger polarer Naturstoffe wie Zucker 2), AminosgLuren 3), Peptide 4) und Komponenten
der DNA 5' 6) d e m o n s t r i e r t . Thermisch optimaler
labile bzw.
wenig
Emitter-Temperatur
Fragrnentierung.
Auftretende
br~iahen und sind daher 10 -6
fl(ichtige Substanzen
10-9g,
am
bet der Strukturaufkl~irang tische Methoden
wegen
hSheren
Substanzbedarfs
Material
und Methoden
aufgenommene
FD-Spektren
Fragmentationen
resultieren
leicht interpretierbar.
absorbiert
~iberwiegend
des geringen
ist FD-MS
Elektronenenergie
yon 70 eV,
quellentemperatur
von ca. 250°C
kSnnen.
wurden
rnit einem
Substanzverbrauchs
aufgenomrnen. zwischen
massenspektrornetrischen
Daten
wurden
WDV-Miinchen
und auf einem Varian
irn On-line
MAT
23
analy-
oder wegen
bet einer
erfolgte durch (10 -7 Torr).
Gber eine IBM
1627 Plotter ausgegeben. CH4
andere
von +3, 5 kV und einer Ionen-
im Hochvakuum
Betrieb
wenn
9000 GC-MS,
Die Probeneingabe
20 ° und 60°C
IBM
dann,
von
Identit~tskriterium
Verbindungen
LKB
einer Besehleunigungsspannung
la~ bet einer Tiegeltemperatur
rnit einern modifizierten
werden
aus direkten Bindungs-
ein geeignetes
Polarit~it der zu untersuchenden
nicht eingesetzt
Bet
zeigen keine oder nur geringe
von Metaboliten 7' 8). Dies gilt vor allem
Die Elektronensto~-(EI)-Massenspektren
wurden
Wegen
Feldionen-Emitter,
der hohen
verarbeitet
liefern hohe MolekGlionenintensit~iten.
Spektrometer
DirekteinDie
1130 und Interface
Die FD-Spektren
mit Doppelfokussierungszusatz
24
No. 1
aufgenommen und manueLl in den Rechner eingegeben. Bet allen Messungen dienten hochtemperatur-aktivierte i0 tim Wolframdr~ihte5) als Emitter. Aktivierung bedeutet, daf~ aus Benzonitril auf der Oberfl~iche des Drahtemitters feine Mikronadeln, die bei hochtemperatur-aktivierten Emittern aus reinem Kohlenstoff bestehen, erzeugt werden. Der Emitter wurde durch Eintauchen in eine ges~ttigte Lbsung (Aceton, 20°C) mit der Substanz belegt und nach Verdampfen des L6sungsmittels durch ein Schleusensystem in die Ionenquelle eingeftihrt. Die Konstruktion und Wirkungsweise des Schleusensystems wurde kfirzlich ausffihrlich beschrieben6! Der entscheidende Unterschied zu anderen massenspektrometrischen Methoden besteht darin, da6 die Probe nicht aus einem Mikrotiegel heraus verdampft wird, sondern bei Anlegen eines hohen elektrischen Feldes (
106V/cm) als Ionen desorbiert. Die so entstandenen Ionen k6nnen
dann in konventioneller Weise im Massenspektrometer registriert werden. Mit wachsender Polarit~it der untersuchten Verbindungen desorbieren diese nicht mehr bet Raumtemperatur,
daher ist es notwendig, den Emitter mit einem stabilisierten Gleichstrom
zu heizen. Ist das Ziel der FD-MS Analyse die Bestimmung des Molekulargewichtes, so wird man nut den Heizstrom anwenden, der gerade ausreicht, um ein Spektrum der Probe aufzunehmen. Dieser niedrigste Emitter-Heizstrom wird im folgenden mit nFH bezeichnet und ist in den FD-Spektren in Milliampere (mA) angegeben. Wie vorteilhaft die eingangs erw~ihnten Merkmale der Felddesorption bei der massenspektroskopischen Untersuchung yon Pestiziden und deren Metaboliten genutzt werden k6nnen, soll hier am Beispiel einiger Modellsubstanzen gezeigt werden; diese sind die Insektizide Chlorden und Kelevan sowie die Metaboliten 1-Hy-
10)
droxichlorden 9) bzw. Kelevans~iure
.
Ergebnisse und Diskussion Beim Vergleich der in Abbildungen I - IV dargestellten El- und FD-Spektren ergeben sich zwei wesentliche Unterschiede: 1. Die relativen Intensit~iten der Molekiilionen-Peaks sind in allen FD-MS urn ein Vielfaches erh6ht, dies trifft selbst ffir die stark polaren Abbauprodukte der Pestizide zu. 2. Die beim niedrigsten Emitter-Heizstrom (nEll) aufgenommenen FD-Spektren zeigen keine oder nur geringe Fragmentierung (Abbildung Ill b, Kelevan (M-28)). Durch Erh6hung des Emitter-Heizstroms kann man eine st~rkere Fragmentierung thermisch induzieren und auf • 5,7,8) diese Weise wertvolle Strukturinformation gewmnen (Abb. I-IV) Zur Erlfiuterung EI- und FD-MS Beispiel
der Massenspektren in Tabelle
FD-MS
I zusammengestellt.
fiir die Anwendung der FD-MS
ziden und insbesondere anderen
der untersuchten
deren polaren
Metaboliten.
neue analytische
Vorziige und Anwendung der FD-Methode Chemie, Probe~
besonders werden
zur Identifizierung
demn~chst
Die vorliegenden
bet der Charakterisierung
anal~Ttischen Methoden komplement~ire als siginifikante,
Verbindungen
sind die Resultate
Ergebnisse
liefern
und Identifizierung
Der geringe Substanzbedarf
Charakter
der
ein gutes von Pesti-
u n d d e r zu
der gewonnenen Information
lassen
Methode erscheinen. bet Bearbeitung
spezieller
von Umweltchemikalien
hier beschrieben.
Probleme
der 5kologischen
11) i n n u r v o r g e r e i n i g t e n
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No. I
29
Tabelle 1: Vereinfaehte C h a r a k t e r i s i e r u n g der untersuehten Substanzen x
m / e ( % Re1. Intensit~t ), xx
aus R e t r o - D i e l s - A l d e r - R e a k t i o n
+
Abb. Name
Nr.
M Peak und wichtigste Fragmentionen x mit v o r g e s c h l a g e n e r Bruttoformel
lED
EI
Basispeak (rel. Int. = 100 %) m/e EI FD
+
+
M 336 (2) C10H6CI6 270 (20) C5CI6 xx I
235 (30) C5CI5 xx
Chlorden
230 (28) C10H5C13
M 336 (50)
66
338
M+352 (55)
81
354
237
634
196 (30) CIoH6CI2 i01 (10)[C5H6C ~ ? 66 (100) C5H 6 xx M+352 (0,1) C10H6OC16
II
317 (23) C10H6OC15
1- Hydroxi-
316 (7) C10H5OC15 82 (95) C5H60 xx
chlorden
81 (100) C5H50 xx 4-
M
+
630 (1) C17H1204Cl10 M 630 612 (<1) C17H1003C11~-
(38)
602 (<2) C15H804CII0 585 (9) CI 5H703C110 557 (4) C14H702C110 Ill
Kelevan
529 (6) C12H302CLI0 511 (I) C12H O C110 451 (1) CI00 C19 388
(3) C9C18
381 (4) C l 0 0 C17 353 (10) C9C17 318 (5) C9Cl 6 283 (7) C9C15 270 (44) C5CI6
259 (38) C7H302C14 235 (70) C5CI5 217 (36) C5H O C14
-
30
Abb. N r . Name
No, I
nu
x
EI
FD
Basispeak (tel. Int. = 100 %) m/e EI FD
M+602 (0,3) C15H804Cl10
M+602 (19)
101
M P e a k und wichtigste F r a g m e n t i o n e n mit v o r g e s c h l a g e n e r B r u t t o f o r m e l
606
584 (<1) C15H603Cl10 567 (<1) C15H804C19 547 ~<1) [C12H302Cl10 + H20] ? 529 (10) C12H302Cl10
511 (<1)C12HOC110 484 (<1) ? IV Kelevan-
451 (1) C100 C19
s~iure
353 (4) C9C17 318 (3) C9C16 (fiberlagert) 383 27O (10) C5C16 259 (14) C7H302C14 235 (24) C5C15 217 (?) C5H O C14(tiberl. ) 214 101
(15) C6H2CI4 (I00) C4H503
]]-
Literatur 1) H.D. Beckey, Int. J. Mass Spectrom. Ion. P h y s . 2 , 500 (1969) 2) H . D . Beckey, "Field Ionization Mass S p e c t r o m e t r y " , P e r g a m o n P r e s s , Oxford und Akademie Verlag, Berlin, 1971, S. 307 3) H.U. Winkler und H.D. Beckey, O r g . Mass Spectrom. 6, 655 (1972) 4) H . U . Winkler und H.D. Beckey, Biochem. Biophys. R e s . Commun. 4___66,No. 2, 391 (1972) 5) H . R . Schulten und H.D. Beckey, Org. Mass Spectrom. 6, 885 (1972) 6) H . R . Schulten und H.D. Beckey, Org. Mass S p e c t r o m . , eingereicht Nov. 1972 7) H . R . Schulten und H.D. Beckey, R e s e a r c h Conference on P e s t i c i d e MetabolitesEnzymology, Isolation, and C h a r a c t e r i z a t i o n , F a r g o , N . D . , 20. Juni 1972 8) H . R . Schultenund H.D. Beckey, J. Agr. Food C h e m . , eingereicht Aug. 1972 9) R. Kaul, W. Klein und F. Korte, T e t r a h e d r o n 10} F. Korte et a l . , P r i v a t m i t t e i l u n g 11) F. Korte, C h e m o s p h e r e 1 (5) 183, 1972
26, 331 (1970)