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Imagerie in vivo : la microscopie confocale à 2 photons
1S44
Ann Pathol 2004 ; 24 : 1S41-1S46
Références [1] Scoazec JY. Tissue and cell imaging in situ : potential for applications in pathology and endoscopy. Gut 2003 ; 52 (Suppl 4) : 1-6. [2] Tadrous PJ. Methods for imaging the structure and function of living tissues and cells : 3.Confocal microscopy and micro-radiology. J Pathol 2000 ; 191 : 345-54. [3] Colin M, Maurice M, Trugnan G, Kornprobst M, Harbottle RP, Knight A, et al. Cell delivery, intracellular trafficking and expression of an integrin-mediated gene transfer vector in tracheal epithelial cells. Gene Ther 2000 ; 7 : 139-52. [4] Rondanino C, Bousser MT, Monsigny M, Roche AC. Sugar-dependent nuclear import of glycosylated proteins in living cells. Glycobiology 2003 ; 13 : 509-19. [5] Jarry A, Charrier L, Bou-Hanna C, Devilder MC, Crussaire V, Denis MG, et al. Position in cell cycle controls the sensitivity of colon cancer cells to nitric oxide-dependent programmed cell death. Cancer Res 2004 ; 64 : 4227-34. [6] O’Sullivan J, Whyte L, Drake J, Tenniswood M. Alterations in the post-translational modification and intracellular trafficking
[7]
[8]
[9]
[10] [11]
of clusterin in MCF-7 cells during apoptosis. Cell Death Differ 2003 ; 10 : 914-27. Umest Adiga PS, Chaudhuri BB. Segmentation and counting of FISH signals in confocal microscopy images. Micron 2000 ; 31 : 5-15. Spyridonidis A, Schmitt-Graff A, Tomann T, Dwenger A, Follo M, Behringer D, et al. Epithelial tissue chimerism after human hematopoietic cell transplantation is a real phenomenon. Am J Pathol 2004 ; 164 : 1147-55. Scott IS, Heath TM, Morris LS, Rushbrook SM, Bird K, Vowler SL, et al. A novel immunohistochemical method for estimating cell cycle phase distribution in ovarian serous neoplasms : implications for the histopathological assessment of paraffin-embedded specimens. Br J Cancer 2004 ; 90 : 158390. Ruocco E, Argenziano G, Pellacani G, Seidenari S. Noninvasive imaging of skin tumors. Dermatol Surg 2004 ; 30 : 301-10. Kaufman SC, Musch DC, Belin MW, Cohen EJ, Meisler DM, Reinhart WJ, et al. Confocal microscopy : a report by the American Academy of Ophthalmology. Ophthalmology 2004 ; 111 : 396-406.
Visualiser une molécule unique. L’exemple du récepteur à la glycine dans la synapse TRILLER A Biologie Cellulaire de la Synapse, École Normale Supérieure.
Les nanocristaux, constitués de matériel semiconducteur, ont des dimensions de l’ordre du nanomètre. Lorsqu’ils sont excités par un rayon lumineux, ils émettent en retour de la lumière à une longueur d’onde qui dépend de la taille et de la géométrie du cristal semi-conducteur. Par rapport aux fluorochromes organiques habituels, ils ne perdent pas de leur luminosité lors des expositions même prolongées à la lumière et ils émettent dans une bande restreinte de longueur d’onde. Nous avons pu utiliser des nanocristaux pour visualiser, dans des cultures de moelle épinière de rat, les mouvements d’un seul récepteur à la glycine, un acide aminé inhibiteur libéré par l’élément présynaptique, sur des périodes d’observation de quelques millisecondes à plusieurs minutes [1, 2]. Le nanocristal était lié à la partie extracellulaire du récepteur. Celui-ci est localisé dans le domaine synaptique, la région périsynaptique ou à distance de la synapse. C’est par diffusion latérale, dans le plan de la membrane plasmique, que le récepteur pénètre dans la zone synaptique. L’activité
du récepteur modifie sa mobilité : sa diffusion est facilitée et la viscosité apparente du domaine extrasynaptique paraît augmentée lorsque l’activité excitatrice est forte. La dépolymérisation des microtubules et de l’actine accroît également la diffusion du récepteur dans les domaines synaptique et extrasynaptique, respectivement. Ces données suggèrent que les mouvements du récepteur sont régulés par la polymérisation du cytosquelette sous-membranaire, elle-même liée au niveau d’activité.
Références [1] Choquet D, Triller A. The role of receptor diffusion on the organization of the postysnaptic membrane. Nature Rev. Neurosci 2003 ; 4 : 251-265. [2] Dahan M, Lévi S, Rostaing P, Riveau B, Triller A. Single quantum dot tracking of glycine receptors reveals heterogeneous diffusion dynamics. Science 2003 ; 302 : 442-5.
Imagerie in vivo : la microscopie confocale à 2 photons TRUGNAN G Paris.
Texte non parvenu.
© Masson, Paris, 2004
Ann Pathol 2004 ; 24 : 1S41-1S46
Références [1] Scoazec JY. Tissue and cell imaging in situ : potential for applications in pathology and endoscopy. Gut 2003 ; 52 (Suppl 4) : 1-6. [2] Tadrous PJ. Methods for imaging the structure and function of living tissues and cells : 3.Confocal microscopy and micro-radiology. J Pathol 2000 ; 191 : 345-54. [3] Colin M, Maurice M, Trugnan G, Kornprobst M, Harbottle RP, Knight A, et al. Cell delivery, intracellular trafficking and expression of an integrin-mediated gene transfer vector in tracheal epithelial cells. Gene Ther 2000 ; 7 : 139-52. [4] Rondanino C, Bousser MT, Monsigny M, Roche AC. Sugar-dependent nuclear import of glycosylated proteins in living cells. Glycobiology 2003 ; 13 : 509-19. [5] Jarry A, Charrier L, Bou-Hanna C, Devilder MC, Crussaire V, Denis MG, et al. Position in cell cycle controls the sensitivity of colon cancer cells to nitric oxide-dependent programmed cell death. Cancer Res 2004 ; 64 : 4227-34. [6] O’Sullivan J, Whyte L, Drake J, Tenniswood M. Alterations in the post-translational modification and intracellular trafficking
[7]
[8]
[9]
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of clusterin in MCF-7 cells during apoptosis. Cell Death Differ 2003 ; 10 : 914-27. Umest Adiga PS, Chaudhuri BB. Segmentation and counting of FISH signals in confocal microscopy images. Micron 2000 ; 31 : 5-15. Spyridonidis A, Schmitt-Graff A, Tomann T, Dwenger A, Follo M, Behringer D, et al. Epithelial tissue chimerism after human hematopoietic cell transplantation is a real phenomenon. Am J Pathol 2004 ; 164 : 1147-55. Scott IS, Heath TM, Morris LS, Rushbrook SM, Bird K, Vowler SL, et al. A novel immunohistochemical method for estimating cell cycle phase distribution in ovarian serous neoplasms : implications for the histopathological assessment of paraffin-embedded specimens. Br J Cancer 2004 ; 90 : 158390. Ruocco E, Argenziano G, Pellacani G, Seidenari S. Noninvasive imaging of skin tumors. Dermatol Surg 2004 ; 30 : 301-10. Kaufman SC, Musch DC, Belin MW, Cohen EJ, Meisler DM, Reinhart WJ, et al. Confocal microscopy : a report by the American Academy of Ophthalmology. Ophthalmology 2004 ; 111 : 396-406.
Visualiser une molécule unique. L’exemple du récepteur à la glycine dans la synapse TRILLER A Biologie Cellulaire de la Synapse, École Normale Supérieure.
Les nanocristaux, constitués de matériel semiconducteur, ont des dimensions de l’ordre du nanomètre. Lorsqu’ils sont excités par un rayon lumineux, ils émettent en retour de la lumière à une longueur d’onde qui dépend de la taille et de la géométrie du cristal semi-conducteur. Par rapport aux fluorochromes organiques habituels, ils ne perdent pas de leur luminosité lors des expositions même prolongées à la lumière et ils émettent dans une bande restreinte de longueur d’onde. Nous avons pu utiliser des nanocristaux pour visualiser, dans des cultures de moelle épinière de rat, les mouvements d’un seul récepteur à la glycine, un acide aminé inhibiteur libéré par l’élément présynaptique, sur des périodes d’observation de quelques millisecondes à plusieurs minutes [1, 2]. Le nanocristal était lié à la partie extracellulaire du récepteur. Celui-ci est localisé dans le domaine synaptique, la région périsynaptique ou à distance de la synapse. C’est par diffusion latérale, dans le plan de la membrane plasmique, que le récepteur pénètre dans la zone synaptique. L’activité
du récepteur modifie sa mobilité : sa diffusion est facilitée et la viscosité apparente du domaine extrasynaptique paraît augmentée lorsque l’activité excitatrice est forte. La dépolymérisation des microtubules et de l’actine accroît également la diffusion du récepteur dans les domaines synaptique et extrasynaptique, respectivement. Ces données suggèrent que les mouvements du récepteur sont régulés par la polymérisation du cytosquelette sous-membranaire, elle-même liée au niveau d’activité.
Références [1] Choquet D, Triller A. The role of receptor diffusion on the organization of the postysnaptic membrane. Nature Rev. Neurosci 2003 ; 4 : 251-265. [2] Dahan M, Lévi S, Rostaing P, Riveau B, Triller A. Single quantum dot tracking of glycine receptors reveals heterogeneous diffusion dynamics. Science 2003 ; 302 : 442-5.
Imagerie in vivo : la microscopie confocale à 2 photons TRUGNAN G Paris.
Texte non parvenu.
© Masson, Paris, 2004