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Inactivation du virus zika par amotosalen et illumination aux ultraviolets A
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Posters / Transfusion Clinique et Biologique 22 (2015) 215–272
Tableau 1
∗
Auteur correspondant. Adresse e-mail : [email protected] (M. Aubry)
Introduction Le risque de transmission du virus zika (ZIKV) par transfusion sanguine a précédemment été montré. L’inactivation des produits sanguins est une méthode permettant de réduire le risque infectieux post-transfusionnel. L’inactivation de virus proches du ZIKV, tels que les virus du Nile occidental et de la dengue, par l’utilisation d’un psoralène (amotosalen) associé à une illumination par ultraviolets A, a été décrite. Dans notre étude, nous montrons que cette méthode permet également d’inactiver le ZIKV dans le plasma. Matériel et méthodes Quatre unités de plasma ont été inoculées avec du ZIKV puis transférées dans des poches INTERCEPT (INT3102B, Cerus Corporation). Trois poches ont été inactivées avec l’amotosalen et 3 J/cm2 d’UVA durant ∼ 6 min, la 4e poche a servi de témoin de non-inactivation. Les charges virales (DICT50 /mL) et quantités d’ARNs viraux (log10 copies/mL) ont été déterminées pré- et post-inactivation ainsi qu’après 5 passages successifs sur cellules de rein de singe VERO. Résultats Avant inactivation, la charge virale moyenne était de 6,57 log10 DICT50 /mL. Après inactivation, aucune particule virale n’a été détectée, même après 5 passages sur cellules (Tableau 1). La quantité moyenne d’ARNs viraux était respectivement de 10,25 log10 copies/mL avant inactivation, 9,51 log10 copies/mL immédiatement après inactivation, 3,86 log10 copies/mL après le 1er passage sur cellules et devenait indétectable à partir du 2nd passage. Conclusions Nous avons montré que l’amotosalen combiné à l’illumination par UVA permet de réduire la charge virale d’au moins 6,57 log, confirmant ainsi l’efficacité de cette méthode à inactiver le ZIKV dans le plasma. Tableau 1
Déclaration d’intérêts Les auteurs M. Aubry, V. Richard, J. Broult et D. Musso déclarent ne pas avoir de conflits d’intérêts en relation avec cet article. J. Green est une employée de Cerus Corporation. Cette étude a été partiellement financée par Cerus Corporation. Déclaration d’intérêts Les auteurs déclarent ne pas avoir de conflits d’intérêts en relation avec cet article.
http://dx.doi.org/10.1016/j.tracli.2015.06.043
http://dx.doi.org/10.1016/j.tracli.2015.06.042
P042
P041
Détection bactérienne dans les concentrés de plaquettes : étude de faisabilité du système BacTx® (Immunetics)
Inactivation du virus zika par amotosalen et illumination aux ultraviolets A M. Aubry 1,∗ , V. Richard 1 , J. Green 2 , J. Broult 3 , D. Musso 1 1 Institut Louis Malardé, Papeete, Tahiti, Polynésie fran¸ caise 2 Cerus Corporation, Concord, États-Unis 3 C.T.S. de la Polynésie fran¸ caise, hôpital du Taaone, Pirae, Polynésie fran¸caise
S. Leyerloup 1,∗ , C. Chabre 1 , S. Ducroz 2 , L. Germe 1 , C. Salat 3 , G. Berlie 4 , G. Chanal 1 , S. Duboeuf 5 , F. Linossier 5 , P. Trublereau 6 , D. Legrand 5 , P. Morel 7 , P. Fabrigli 1 1 EFS Auvergne-Loire, Clermont-Ferrand, France 2 EFS Auvergne-Loire, Montlu¸ con, France 3 EFS Auvergne-Loire, Aurillac, France
Posters / Transfusion Clinique et Biologique 22 (2015) 215–272
Tableau 1
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Auteur correspondant. Adresse e-mail : [email protected] (M. Aubry)
Introduction Le risque de transmission du virus zika (ZIKV) par transfusion sanguine a précédemment été montré. L’inactivation des produits sanguins est une méthode permettant de réduire le risque infectieux post-transfusionnel. L’inactivation de virus proches du ZIKV, tels que les virus du Nile occidental et de la dengue, par l’utilisation d’un psoralène (amotosalen) associé à une illumination par ultraviolets A, a été décrite. Dans notre étude, nous montrons que cette méthode permet également d’inactiver le ZIKV dans le plasma. Matériel et méthodes Quatre unités de plasma ont été inoculées avec du ZIKV puis transférées dans des poches INTERCEPT (INT3102B, Cerus Corporation). Trois poches ont été inactivées avec l’amotosalen et 3 J/cm2 d’UVA durant ∼ 6 min, la 4e poche a servi de témoin de non-inactivation. Les charges virales (DICT50 /mL) et quantités d’ARNs viraux (log10 copies/mL) ont été déterminées pré- et post-inactivation ainsi qu’après 5 passages successifs sur cellules de rein de singe VERO. Résultats Avant inactivation, la charge virale moyenne était de 6,57 log10 DICT50 /mL. Après inactivation, aucune particule virale n’a été détectée, même après 5 passages sur cellules (Tableau 1). La quantité moyenne d’ARNs viraux était respectivement de 10,25 log10 copies/mL avant inactivation, 9,51 log10 copies/mL immédiatement après inactivation, 3,86 log10 copies/mL après le 1er passage sur cellules et devenait indétectable à partir du 2nd passage. Conclusions Nous avons montré que l’amotosalen combiné à l’illumination par UVA permet de réduire la charge virale d’au moins 6,57 log, confirmant ainsi l’efficacité de cette méthode à inactiver le ZIKV dans le plasma. Tableau 1
Déclaration d’intérêts Les auteurs M. Aubry, V. Richard, J. Broult et D. Musso déclarent ne pas avoir de conflits d’intérêts en relation avec cet article. J. Green est une employée de Cerus Corporation. Cette étude a été partiellement financée par Cerus Corporation. Déclaration d’intérêts Les auteurs déclarent ne pas avoir de conflits d’intérêts en relation avec cet article.
http://dx.doi.org/10.1016/j.tracli.2015.06.043
http://dx.doi.org/10.1016/j.tracli.2015.06.042
P042
P041
Détection bactérienne dans les concentrés de plaquettes : étude de faisabilité du système BacTx® (Immunetics)
Inactivation du virus zika par amotosalen et illumination aux ultraviolets A M. Aubry 1,∗ , V. Richard 1 , J. Green 2 , J. Broult 3 , D. Musso 1 1 Institut Louis Malardé, Papeete, Tahiti, Polynésie fran¸ caise 2 Cerus Corporation, Concord, États-Unis 3 C.T.S. de la Polynésie fran¸ caise, hôpital du Taaone, Pirae, Polynésie fran¸caise
S. Leyerloup 1,∗ , C. Chabre 1 , S. Ducroz 2 , L. Germe 1 , C. Salat 3 , G. Berlie 4 , G. Chanal 1 , S. Duboeuf 5 , F. Linossier 5 , P. Trublereau 6 , D. Legrand 5 , P. Morel 7 , P. Fabrigli 1 1 EFS Auvergne-Loire, Clermont-Ferrand, France 2 EFS Auvergne-Loire, Montlu¸ con, France 3 EFS Auvergne-Loire, Aurillac, France